Меню

Обеззараживания лабораторного оборудования что это такое



Обеззараживание и утилизация отходов медицинских лабораторий

Обеззараживание и утилизация отходов медицинских лабораторий

Отходы, образующиеся в медицинских лабораториях, требуют проведения процедур обеззараживания и утилизации. Ёмкости и инструменты, загрязненные биожидкостями, согласно санитарным нормам, необходимо обрабатывать. Обеззараживание проводится физическими и химическими методами. На предметы воздействуют паром под давлением, высокой температурой, излучением.

Методы обеззараживания пробирок

По окончании исследований изделия подвергают физическому воздействию. Согласно СанПиН перед утилизацией вакуумных пробирок с кровью производят автоклавирование — воздействие паром под высоким давлением при температуре 1210 градусов и давлении 1,2 атмосфер. Ёмкости, содержащие кровь, собирают в контейнеры или пакеты, предотвращающие вытекание, и помещают в автоклав. После процедуры отходы относятся к группе опасности «Б». Их помещают в место для временного хранения с последующим вывозом и утилизацией. Работать с автоклавом могут сотрудники, прошедшие обучение правилам эксплуатации оборудования. Если нет возможности применения автоклавирования, пробирки с кровью перед утилизацией подвергают воздействию СВЧ-поля. Специальные установки воздействуют на потенциально опасные лабораторные отходы в условиях влажной среды. Оборудование оснащено системой очистки воды перед выводом в канализацию. В результате достигают эффекта дезинфекции. Предметы используются однократно, повторное использование запрещено.

Дезинфекция шприцев и игл однократного применения

Шприцы для медицинских манипуляций после использования подлежат дезинфекции. Для процедуры необходимы ёмкости для обеззараживания игл и шприцев. Тара должна быть непрокалываемой, с оснащением иглосъемником. В процессе дезинфекции игл одноразового использования применяют средства, эффективно воздействующие на возбудителей инфекций.

Алгоритм дезинфекции шприцев и игл

Необходимо подготовиться к процедуре. Ёмкости для обеззараживания шприцев и игл на 2/3 заполняют средством для дезинфекции.

  1. После инъекции иглы не накрывают колпачком, производят раздельное обеззараживание иглы и шприца.
  2. В шприц набирают дезинфицирующий раствор.
  3. Иглу отсоединяют путем снятия иглосъемником, отсечением иглоотсекателем или деструктором и помещают в ёмкость с дезраствором. Корпус шприца помещают в тару для обеззараживания.
  4. Проводят дезинфекцию в соответствии с инструкцией, с соблюдением экспозиционной выдержки.
  5. Из сосуда для обеззараживания игл, который на 3/4 наполнен иглами, сливают раствор и закрывают крышкой. Ёмкость помещают в контейнер, промаркированный как опасные отходы «Б» класса.
  6. В таре, где обрабатывались шприцы, поднимают поддон и выпускают раствор посредством поршня. Предметы упаковывают в пакет и выполняют маркировку как опасных отходов «Б» класса.
  7. Мини-контейнеры с пакетами шприцев и игл хранят в специальном помещении до конца рабочей смены.
  8. Транспортировка до места утилизации.

Утилизация вакуумных систем для взятия крови

Современные приспособления для взятия крови — высокотехнологичные изделия, включающие вакуумную пробирку, держатель и иглы. Продукция изготавливается из специальных материалов, содержит вещества для стабилизации проб и пробоподготовки. Использование в медицинской практике новых систем улучшило качество результатов исследований, повысило безопасность работы персонала. Благодаря универсальности продукции она получила широкое распространение в лабораторной практике. Одним из преимуществ применения вакуумных систем является экономия на дезсредствах. Предметы не требуется дезинфицировать, после использования они относятся к категории отходов «Б» класса опасности. Вакуумные системы подвергаются процедуре обеззараживания и утилизации в соответствии с нормами и правилами. Согласно нормативам системы для забора крови утилизируют аналогично одноразовым шприцам. Медперсоналу, занимающемуся сбором, обеззараживанием, хранением и транспортировкой медицинских отходов запрещено:

  • собирать отходы без резиновых перчаток и санитарной одежды;
  • пересыпать детали вакуумных систем из одной тары в другую;
  • оставлять контейнер рядом с электронагревательными устройствами;
  • выполнять утрамбовку отходов руками.

Для сбора опасных отходов используют специальные контейнеры, баки или пакеты, которые должны отвечать требованиям и иметь свидетельство о госрегистрации.

Источник

Обеззараживание помещений и оборудования лабораторий

Под микробным обеззараживанием понимается комплекс мероприятий, средств и методов, обеспечивающих снижение воздушного и поверхностного загрязнения рабочих помещений до требуемых уровней. Это понятие более широкое, чем понятие дезинфекция, которая служит лишь одним из элементов микробного обеззараживания.

Для обеззараживания различных объектов имеется большой выбор дезинфицирующих средств, а также комбинаций дезинфектантов и детергентов с приемлемой бактерицидной активностью и незначительным коррозионным действием. Однако средства и методы обеззараживания определяются в каждом конкретном случае в зависимости от вида ПБА и характера обрабатываемого объекта (СП 1.3.1285-03).

Например, при работе с вегетативными формами бактерий I – II групп патогенности обеззараживание поверхностей (стол, оборудование, стены, двери) в помещениях «заразной» зоны лаборатории проводят 1 % раствором хлорамина Б, 3 % раствором перекиси водорода (время экспозиции 60 мин), 0,2 % раствором ДП-2 (экспозиция 30 мин) или другим дезинфицирующим средством, обладающим бактерицидной активностью в отношении указанных агентов.

Режим обеззараживания аналогичных объектов в лаборатории, проводящей исследование со спорообразующими бактериями, отличается. В этом случае стол, стены, двери, оборудование др. протирают двукратно с интервалом 30 мин 6 % раствором перекиси водорода с 0,5 % моющего средства (экспозиция 120 мин) или двукратно с интервалом 30 мин орошают 1 % активированным раствором хлорамина Б (экспозиция 120 мин), используя гидропульт, автомакс или распылитель типа «Квазар» (рис. 1).

Каждая серия поступающего в лабораторию дезинфицирующего средства должна проверятся на бактерицидную активность и процентное содержание активного вещества. Так, содержание активного хлора (АХ) в хлорамине Б должно быть не менее 24 %. Перекись водорода медицинская может быть использована с содержанием перекиси водорода не менее 30 %.

Читайте также:  Плата за годовое обслуживание газового оборудования

Дезинфицирующие растворы для лабораторного использования готовит лаборант или дезинфектор под руководством врача или научного сотрудника в специально оборудованном помещении, надев халат, очки, маску, резиновые перчатки. Сроки использования готовых (рабочих) дезинфицирующих растворов регламентированы нормативными документами. Например, рабочий раствор велтолена, хлорамина необходимо менять на свежеприготовленный каждый день.

В лаборатории хранят не менее чем недельный запас дезсредств. Следует отметить, что запрещено одновременное использование 6 % раствора перекиси водорода и 3 % раствора хлорамина в пределах лаборатории в связи с взрывоподобным характером протекания химической реакции при смешивании этих растворов.

Спецобработка помещений, оборудования и различных объектов лаборатории подразделяется на ежедневную (текущую) и периодическую (генеральную). В случае возникновения аварии, при которой создается реальная или потенциальная возможность попадания ПБА в воздух или на поверхность оборудования лаборатории, обеззараживание проводится незамедлительно.

Текущую дезинфекцию рабочих поверхностей в микробиологических комнатах (боксах) проводит лаборант под контролем врача, используя соответствующий виду ПБА дезинфектант и режим обработки. После необходимой экспозиции младший персонал под наблюдением лаборантов делает влажную уборку помещения.

Каждую рабочую зону лаборатории обеспечивают индивидуальным промаркированным набором уборочного инвентаря, который не разрешается использовать для уборки других помещений. После каждой уборки ветошь обрабатывают дезраствором, прополаскивают в воде и просушивают. Емкости также подвергают обработке.

Еженедельно в помещениях «заразной» зоны проводят генеральную уборку, используя дезинфицирующие средства. Протирают стены на высоту до 2 м, мебель, приборы, аппараты и др. Термостаты и холодильники (после очищения от наледи) один раз в месяц подвергают дезинфекционной обработке.

После влажной уборки проводят обеззараживание воздуха и поверхностей помещениях «заразной» зоны ультрафиолетовыми лучами (УФ).

Бактерицидным действием обладает ультрафиолетовое излучение с диапазоном длин волн 205-315 нм, которое проявляется в деструктивно-модифицирующих фотохимических повреждениях ДНК клеточного ядра микроорганизма, что приводит к гибели микробной клетки в первом или последующем поколении. Однако следует учитывать, что УФ-излучение оказывает на микроорганизмы не только бактерицидное, но и мутагенное действие, приводя к появлению резистентных к данному фактору форм.

Более чувствительны к воздействию ультрафиолетового излучения бактерии в вегетативной форме и вирусы. Менее чувствительны грибы и простейшие микроорганизмы. Наибольшей устойчивостью обладают споровые формы бактерий.

Бактерицидные лампы вмонтированы в бактерицидные облучатели, которые подразделяются на открытые (потолочные, напольные или настенные), комбинированные (настенные) и закрытые. Открытые и комбинированные облучатели предназначены для обеззараживания помещения только в отсутствии людей или при кратковременном их пребывании в помещении в защитных очках со светофильтрами. Бактерицидные облучатели устанавливают в соответствии с нормативными документами по их установке и эксплуатации.

Время УФ-облучения зависит от профиля лаборатории, габаритов помещения, типа бактерицидной установки, объекта обеззараживания (воздух, поверхность) и других показателей.

На каждый бактерицидный облучатель заводят журнал регистрации и контроля эксплуатации лампы. В журнале фиксируются время их горения и бактерицидная эффективность облучения.

При оценке бактерицидной эффективности ультрафиолетового облучения воздушной среды помещения или поверхностей в качестве санитарно-показательного микроорганизма принимается Staphylococcus aureus. Для контроля обсемененности воздуха в помещениях бактериологических и вирусологических лабораториях может быть использован седиментационный метод. В соответствии с этим методом на рабочий стол ставят две чашки Петри с 2 % питательным агаром и открывают их на 15-20 минут. Посевы инкубируют при температуре 37 °С в течение 48 часов. При росте не более 4 колоний S. aureus на чашке, уровень микробной обсемененности воздуха считается допустимым.

Бактерицидные лампы, отработавшие гарантийный срок службы, указанный в паспорте, должны заменяться на новые. Для определения окончания срока службы могут быть использованы электрические счетчики, суммирующие общую наработку ламп в часах, или замеры радиометров, свидетельствующие о падении бактерицидного потока ниже номинального. Периодически (не реже одного раза в неделю) лампы следует очищать от пыли ветошью, смоченной спиртом.

При экстремальных ситуациях для обеззараживания воздуха и поверхностей в боксированных комнатах «заразной» зоны лаборатории применяют аэрозольную дезинфекцию при условии герметизации помещения и отключении приточно-вытяжной вентиляции.

Аэрозоли представляют собой гетерогенные аэродисперсные системы с размерами частиц жидкой дисперсной фазы от 0,1 до 1 000 мкм. Для аэрозольной дезинфекции выбирают системы с диаметром частиц 5 -25 мкм. Распыление дезинфектанта проводят с помощью пневматической (ПВАН) или тубулирующей (ТАН) аэрозольных насадок. Источником сжатого воздуха для распыления служит компрессор производительностью не менее 300 м 3 /ч при рабочем давлении 3-4 атм или аэрозольный генератор. Можно пользоваться аппаратами типа «Квазар».

При аэрозольной дезинфекции наиболее приемлемы жидкие химические препараты (формальдегид, перекись водорода медицинская, велтолен и др.). Концентрация дезинфектанта и режим обеззараживания зависит от вида ПБА, с которым велась работа в лаборатории.

Во время обеззараживания аэрозоль заполняет обрабатываемое помещение, оседает мельчайшими каплями на поверхностях стен, пола, оборудования и воздействует на обсеменяющие их микроорганизмы. Частично аэрозольные капли испаряются и в виде пара проникают в трудно доступные места.

При работе с формальдегидом после необходимой дезинфекционной экспозиции следует провести его нейтрализацию раствором аммиака.

Читайте также:  Ооо ремонт машин и оборудования

Персонал, проводящий обработку, должен иметь кроме халата средства защиты органов дыхания, глаз и кожи.

Источник

Текущая дезинфекция посуды и лабораторного оборудования.

Обработка стеклопосуды включает следующие технологические операции:

— замачивание и мойка (или моюще-дезинфицирующая обработка);

— сушка (или стерилизация);

— контроль качества обработки.

Дезинфекция бывшей в употреблении посуды.Аптечную посуду, бывшую в употреблении, поступившую от населения или из инфекционных отделений лечебно-профилактических учреждений, в обязательном порядке подвергают дезинфекции.

Дезинфицирующие растворы готовят в емкостях (баках) из стекла, пластмассы или покрытых эмалью (эмаль без повреждения) в количествах, необходимых для полного погружения обрабатываемой посуды. Для дезинфекции используют 1% раствор активированного хлорамина с погружением посуды на 30 минут или 3% раствор перекиси водорода с погружением на 80 минут.

Растворы активированного хлорамина готовят растворением хлорамина в водопроводной воде (100 г на 10 л рабочего раствора) с последующим добавлением равного количества активатора (хлористого или сернокислого или азотно-кислого аммония). Для приготовления 10 л 3% раствора перекиси водорода берут 1200 мл пергидроля, добавляя его к соответствующему количеству воды. Хранение приготовленных дезинфицирующих растворов не должно быть более 24 часов. Повторное использование одного и того же раствора не допускается.

После дезинфекции посуду промывают проточной водопроводной водой до исчезновения запаха дезсредства и подвергают мойке растворами моющих средств.

Моюще-дезинфицирующая обработка посуды. Наиболее рационально проводить обработку возвратной посуды растворами моюще-дезинфицирующих средств.

С этой целью для сильно загрязненной посуды целесообразно использовать 1% раствор хлорцина или 0,2% ДП-2 с погружением на 120 минут. Для остальной посуды используют 0,5% раствор хлорцина, 0,1% раствор ДП-2 или 3% раствор перекиси водорода с добавлением 0,5% моющего средства.

Для приготовления рабочих растворов используют закрытые емкости из стекла, пластмассы или покрытые эмалью (эмаль без повреждения). На 10 л рабочего раствора необходимо 50,0 хлорцина или 10,0 ДП-2 или 1,2 л пергидроля с добавлением 50,0 моющего средства.

Посуду полностью погружают в теплый раствор (40-50 С), выдерживают в нем 15 минут, затем моют в этом же растворе с помощью ерша. После этого промывают проточной водопроводной водой (горячей) до полного исчезновения запаха дезсредства, но не менее 5-7 раз. Окончательную отмывку посуды проводят водой очищенной.

Ополаскивание аптечной посуды.Ополаскивание стеклопосуды проводят водопроводной и очищенной (дистиллированной) водой. Аптечную посуду ополаскивают водопроводной водой 7 раз, затем очищенной — 1 раз. При обработке посуды горчицей водопроводной водой достаточно ополоснуть 5 раз.

Стеклопосуду, предназначенную для изготовления стерильных растворов, ополаскивают водопроводной водой 5 раз, очищенной — 3 раза. Оптимально последнее ополаскивание проводить водой для инъекций, профильтрованной через фильтр 5 мкм.

Сушка и стерилизация посуды.Чистую посуду сушат и хранят в закрытых шкафах. Флаконы, предназначенные для инъекционных растворов и глазных капель, стерилизуют. Режим стерилизации: горячим воздухом — при 180 о С — 60 минут или насыщенным паром под давлением при 120 о С — 45 минут. После снижения температуры в стерилизаторе до 60-70 о С посуду вынимают, закрывают стерильными пробками и используют для разлива растворов.

Контроль чистоты вымытой посуды проводят визуально (выборочное по отсутствию посторонних включений, пятен, подтеков, по равномерности стекания воды со стенок флаконов после их ополаскивания.

При необходимости обнаружения на поверхности посуды возможных жировых загрязнений проводят контроль с реактивом, содержащим Судан III. Для этого внутреннюю поверхность вымытой и высушенной посуды смачивают 3-5 мл красящего раствора, распределяют его по исследуемой поверхности в течение 10 сек, затем быстро смывают обильной струей воды. На внутренней поверхности посуды не должно оставаться желтых пятен и подтеков.

Полноту смыва синтетических моющих и моюще-дезинфицирующих средств определяют по величине рН потенциометрическим методом. Значение рН воды очищенной после полного ополаскивания посуды должно соответствовать рН исходной воды, взятой для контрольного смыва. Ориентировочно наличие остатка моющих средств можно определить по розовому окрашиванию с фенол-фталеином .Контроль за соблюдением и эффективностью проводимых санитарно-гигиенических мероприятий в аптеках осуществляет санитарная служба. В случае неудовлетворительных результатов санитарного контроля проводится внеплановая уборка с применением дезинфицирующих средств.

Обработка рук персонала

Обработку рук производят в специально предназначенных местах. Запрещается мыть руки над раковиной для мытья аптечной посуды.

Для механического удаления загрязнений и микрофлоры руки моют теплой проточной водой с мылом в течение 1 — 2 мин., обращая внимание на околоногтевые пространства. Оптимально пользоваться сортами мыла с высокой пенообразующей способностью (банное, детское, хозяйственное). Затем руки ополаскивают водой для удаления мыла и обрабатывают дезсредствами.

В асептическом блоке (в шлюзе) руки после ополаскивания вытирают насухо, надевают стерильную одежду, затем руки смывают водой и обрабатывают дезсредствами. Обработку повторяют, если работа длится более 4 часов.

Для дезинфекции кожи рук используют спирт этиловый 70% или другие спиртосодержащие препараты (АХД-2000, октонидерм, октонисепт), раствор хлоргексидина биглюконата 0,5% (в 70% этиловом спирте), раствор иодопирона и других иодофоров (иодонат, иодвидон) 1%, раствор хлорамина Б 0,5% (при отсутствии других препаратов) или другие средства, разрешенные МЗ РФ для этих целей.

Читайте также:  Оборудование для проведения то системы смазки двигателя

При обеззараживании рук спиртосодержащими препаратами их протирают марлевой салфеткой, смоченной раствором. Одновременно достигается дубление кожи; при использовании растворов хлоргексидина или иодофоров препарат наносят на ладони в количестве 5 — 8 мл и втирают в кожу рук; при обработке рук раствором хлорамина их погружают в раствор и моют в течение 2 минут, затем дают рукам высохнуть.

При окончании работы руки обмывают теплой водой и обрабатывают смягчающими средствами, например, смесью из равных частей глицерина, спирта, 10% раствора аммиака и воды, которую перед применением тщательно встряхивают. Возможно применение других смягчающих средств, готовых кремов, обеспечивающих эластичность и прочность кожи рук.

Источник

Утилизация медицинских отходов после лабораторных исследований

Лаборатории и исследовательские центры лидируют по объему образования опасных медицинских отходов после больниц и поликлиник. Манипуляции с кровью и другими биологическими жидкостями несут потенциальную угрозу распространения инфекций. Поэтому инструментарий, одноразовые медицинские приспособления и все, с чем взаимодействуют сотрудники, требует специальной утилизации.

Какие отходы образуются в медицинских лабораториях

В результате манипуляций и исследований в лабораториях образуются эпидемиологически опасные отходы класса Б и В. Потенциально они могут быть инфицированы, поскольку контактируют с биологическими жидкостями пациентов. К ним относятся:

  • стеклянные пробирки;
  • одноразовые шприцы и иглы;
  • материалы и инструменты многоразового использования;
  • реактивы органической и неорганической природы;
  • отходы лабораторий, работающих с микроорганизмами III–IV групп патогенности.

Схема обращения с медицинскими отходами в лабораториях

Согласно СанПиНу, обращение с опасными медицинскими отходами в лабораториях включает такие этапы:

  • сбор в специальные пакеты и контейнеры;
  • сбор одноразовых емкостей в многоразовую тару;
  • транспортировка многоразовых контейнеров на тележке с ножной педалью к месту дезинфекции, а затем на участок временного хранения;
  • вывоз на утилизацию специализированной компанией.

Как обеззараживают отходы в лабораториях

Требуется утилизация лабораторных отходов?

Остались вопросы? Оставьте данные, проконсультируем бесплатно! Компания «Медсервис24» эксперт утилизации лабораторных отходов.

Заказать звонок

В зависимости от технического оснащения, возможны два варианта:

На отходы воздействуют насыщенным паром под избыточным давлением, высокой температурой, электромагнитным или радиационным излучением. Для этого необходимо специальное оборудование. После обезвреживания медицинских отходов их можно захоронять на полигонах ТБО в измельченном и спрессованном виде.

На шприцы, иглы, пробирки воздействуют дезрастворами с бактерицидным, вирулицидным и фунгицидным действием. Чаще всего прямо в месте образования их погружают в промаркированные емкости с дезинфицирующим средством. Метод менее эффективный, чем физическое обеззараживание: он не дает гарантии полного уничтожения инфекций, представляет угрозу заражения экологии и персонала от высокотоксичных отходов, а также требует немалых затрат на регулярную покупку дезрастворов.

Обеззараживание пробирок

Пробирки контактируют с биологическими жидкостями, поэтому, согласно СанПиНу, перед утилизацией должны быть обеззаражены. Их собирают в герметичные пакеты и помещают в автоклав. Затем их транспортируют в место временного хранения до вывоза на утилизацию.

Если в лаборатории отсутствует автоклав, пробирки с кровью обеззараживают с помощью СВЧ. Емкости обрабатывают СВЧ-полем в условиях влажной среды. Оборудование имеет систему очистки воды, которая предотвращает попадание в канализацию продуктов дезинфекции. Фильтр заменяют раз в год.

Дезинфекция одноразовых шприцев

Шприцы и иглы собирают в непрокалываемые емкости с иглосъемником, который исключает ручной контакт сотрудников с острыми предметами. В них одноразовый инструментарий дезинфицируют:

  • контейнер заполняют дезинфицирующим средством на 2/3 от объема;
  • иглы и шприцы (корпуса и поршни) обеззараживают раздельно;
  • в шприц набирают дезинфицирующий раствор для обработки внутренних поверхностей;
  • иглу отсоединяют с помощью иглосъемника и помещают в один контейнер с раствором, а корпус шприца – в другой, с поддоном и поршнем (иглами можно занимать не более ¾ объема);
  • по истечении регламентированного времени из контейнера для игл сливают раствор и герметично закрывают его крышкой;
  • контейнер помещают в тару большего размера, промаркированную как «Медицинские отходы класса Б»;
  • в таре со шприцами поднимают поддон и выпускают дезраствор с помощью поршня;
  • корпусы шприцов упаковывают в желтый пакет для отходов класса Б и отправляют в место временного хранения до утилизации.

Как утилизируют вакуумные системы для взятия крови

Сегодня в лабораториях все чаще используют не классические стеклянные пробирки, а вакуумные системы для взятия крови, которые состоят из вакуумной пробирки, держателя и иглы. С их введением в лабораторную практику повысился уровень безопасности персонала, а также исчезла необходимость в химической дезинфекции. Лаборатории, использующие вакуумные системы, расходуют значительно меньше средств.

Сразу после использования вакуумные системы для взятия крови попадают в категорию медицинских отходов класса Б. Обеззараживают их физическими методами – путем автоклавирования или под действием СВЧ-поля. Утилизируют – по аналогии с одноразовыми шприцами.

Отходы после лабораторных исследований представляют не меньшую опасность для человека и окружающей среды, чем из инфекционных отделений или тубдиспансеров. Санитарно-эпидемиологическая служба предъявляет жесткие требования к их утилизации, и это не случайно. Любая из пробирок или игл может быть заражена, поэтому важно не дать инфекции ни одного шанса.

Источник